Herzlich willkommen

Ziel der Forschungsarbeiten der Arbeitsgruppe ist das Verständnis von Funktion und Wirkungsweise von membranständigen Proteinen und Membranproteinkomplexen auf der Basis von genau ermittelten dreidimensionalen Strukturen. Hierzu werden molekularbiologische, biochemische, biophysikalische, theoretische und insbesondere kristallographische Methoden eingesetzt. Die bisherigen Projekte umfassten bakterielle Membranproteinkomplexe der Photosynthese und der Bioenergetik. Zunehmend werden in der Arbeitsgruppe eukaryotische Membranproteine bearbeitet. Im Rahmen der Aktivitäten des Sonderforschungsbereichs und der Graduiertenkollegs wird das Themenspektrum um Proteine, die eine Rolle bei weiteren Membrantransportprozessen und bei der Signalleitung spielen, erweitert.
Der Lehrstuhl ist Teil der Fachrichtung Biophysik der Medizinischen Fakultät und zugleich Gründungslehrstuhl des interfakultären Zentrums für Human- und Molekularbiologie (ZHMB) der Universität des Saarlandes.

Veranstaltungen & Mitteilungen des ZHMB

16.06.2025

ZHMB-Kolloquium: Unique mechanisms in maintaining endoplasmic reticulum homeostasis

Dr. Elif Karagöz (Max Perutz Labs, Wien)

am

Montag, 16. Juni 2025

12:30 - 14:00 Uhr

Campus Saarbrücken, Gebäude A 4.3 – Seminarraum 0.01

Link für MS Teams: tinyurl.com/y5xdanu4

Unique mechanisms in sensing protein misfolding in the endoplasmic reticulum

Conserved signaling cascades monitor protein-folding homeostasis to ensure proper cellular function. One of the evolutionary conserved key players is IRE1, which maintains endoplasmic reticulum (ER) homeostasis through the unfolded protein response (UPR). Upon accumulation of misfolded proteins in the ER, IRE1 forms clusters on the ER membrane to initiate UPR signaling. What regulates IRE1 cluster formation is not fully understood. We recently showed that the ER lumenal domain (LD) of human IRE1α forms biomolecular condensates in vitro.  Tethering IRE1α LD to model membranes and its binding to unfolded polypeptides stabilized the condensates, suggesting their role in assembling IRE1α into signaling-competent clusters. Molecular dynamics simulations indicated that weak multivalent interactions drive IRE1α LD clustering. Mutagenesis experiments identified disordered regions in IRE1α LD to control its clustering in vitro and in cells. Importantly, dysregulated clustering of IRE1α mutants led to defects in IRE1α signaling. Our results revealed that disordered regions in IRE1α LD control its clustering. We are currently investigating the potential role of these segments in chaperone-mediated regulation of IRE1α.